如果將細胞連續(xù)培養(yǎng)在同一個容器中，培養(yǎng)密度會逐漸增大，造成細胞衰老、細胞死亡。為了防止這種情況，將少量細胞移植到單獨的容器中，這個過程稱為“傳代”。

傳代程序根據(jù)細胞的性質(zhì)而略有不同，因此請務(wù)必檢查適合您所處理的細胞的方法。在本文中，我們將解釋三種細胞的傳代程序：貼壁細胞和懸浮細胞。

貼壁細胞傳代

貼壁細胞在體外生長，直到培養(yǎng)容器表面被細胞覆蓋或培養(yǎng)基中的營養(yǎng)物質(zhì)耗盡。最好在細胞生長達到完全匯合之前進行傳代。

所需設(shè)備和試劑：

1.預(yù)熱至37°C的完全培養(yǎng)基

2.70%乙醇

3.不含鈣鎂離子的PBS(-)

4.0.25%胰蛋白酶溶液（含或不含EDTA）

5.胰蛋白酶抑制劑（可選）

6.臺盼藍

7.培養(yǎng)皿/培養(yǎng)瓶和標簽

8.倒置顯微鏡

9.離心機（可選，用于收集細胞）

10.血細胞計數(shù)器

11.移液器

貼壁細胞傳代方法：

以下是以0.25%胰蛋白酶為例的貼壁細胞傳代步驟：

1.觀察細胞狀態(tài)：使用倒置顯微鏡觀察細胞形態(tài)和匯合度。

2.移除舊培養(yǎng)基：小心吸出培養(yǎng)皿或培養(yǎng)瓶中的培養(yǎng)基。

3.清洗細胞：用不含鈣鎂離子的PBS(-)清洗細胞，去除殘留的血清，以避免抑制胰蛋白酶活性。（根據(jù)細胞類型，此步驟可省略）

4.加入胰蛋白酶溶液：加入適量的0.25%胰蛋白酶溶液（含或不含EDTA，根據(jù)細胞類型決定），確保覆蓋細胞表面。

5.消化細胞：將培養(yǎng)容器置于37°C孵育器中消化，根據(jù)細胞類型調(diào)整消化時間，通常為1-5分鐘，并密切觀察細胞形態(tài)變化，當細胞變圓并開始脫離瓶底時即可終止消化。

6.終止消化：加入含有血清的完全培養(yǎng)基或胰蛋白酶抑制劑終止胰蛋白酶的消化作用。

7.制備細胞懸液：用吸管輕輕吹打細胞，使細胞完全脫離瓶底并形成均勻的細胞懸液。

8.計數(shù)細胞：使用血細胞計數(shù)器和臺盼藍染色進行細胞計數(shù)和活力檢測。

9.稀釋和接種：根據(jù)所需的細胞密度，用新鮮的完全培養(yǎng)基稀釋細胞懸液，并將細胞懸液接種到新的培養(yǎng)容器中。

10.培養(yǎng)細胞：將新的培養(yǎng)容器放入37°C、5%CO2的孵育器中進行培養(yǎng)。

貼壁細胞傳代技巧

執(zhí)行此操作時需要記住幾點。首先，根據(jù)生長階段，某些細胞系可能與表面的附著較弱，容易脫落。經(jīng)常檢查培養(yǎng)容器內(nèi)部的狀況，注意不要過早地分離細胞。

在步驟3中，用PBS(-)沖洗細胞表面，去除培養(yǎng)基中的血清。這很重要，因為胰蛋白酶在血清存在下不活躍。

當使用胰蛋白酶/EDTA對細胞進行處理時，請以分離細胞所需的最短時間進行處理。長時間接觸可能會損害細胞表面受體。還可以使用非酶細胞分離劑（例如胰蛋白酶）來分離細胞。建議根據(jù)需要使用，例如當您想在溫和的條件下剝皮時。

當將細胞接種到新的培養(yǎng)容器中時，必須用血清中和胰蛋白酶以使細胞粘附。除了使用血清外，還可以使用胰蛋白酶抑制劑（例如來自大豆的抑制劑）來中和胰蛋白酶。在這種情況下，首先向要中和的懸浮液中添加等體積的胰蛋白酶抑制劑（濃度為1mg/mL）。然后將添加的溶液離心，棄去上清液，并將細胞重新懸浮在新鮮培養(yǎng)基中。此程序在無血清培養(yǎng)基中培養(yǎng)時特別有效。

如果沒有二氧化碳培養(yǎng)箱，則用經(jīng)過0.2μm過濾器消毒的空氣中的5%二氧化碳交換氣體1-2分鐘。

如果細胞密度不夠，則以150×g離心5分鐘，并用少量培養(yǎng)基重新懸浮。

懸浮細胞傳代

懸浮細胞通常來源于血細胞或可以在培養(yǎng)基中懸浮生長的細胞。它們可以以單細胞或細胞團塊的形式生長。懸浮細胞的傳代通常比貼壁細胞更容易。

所需設(shè)備和試劑：

1.預(yù)熱至37°C的完全培養(yǎng)基

2.70%乙醇（用于消毒）

3.臺盼藍

4.培養(yǎng)瓶和標簽

5.倒置顯微鏡

6.吸管

7.血細胞計數(shù)器

8.離心機(如果需要分散細胞)

9.條件培養(yǎng)基(可選):

條件培養(yǎng)基是指培養(yǎng)細胞一段時間后收集的培養(yǎng)上清液，其中可能含有細胞分泌的生長因子和其他活性物質(zhì)。對于某些細胞系，可以將少量條件培養(yǎng)基(例如10-20%)添加到新鮮培養(yǎng)基中，以促進細胞生長。但是，使用條件培養(yǎng)基需要謹慎，并根據(jù)具體細胞類型進行優(yōu)化。

以下是懸浮細胞傳代的步驟：

1.檢查細胞狀態(tài):在顯微鏡下觀察細胞的形態(tài)、密度和活力，并檢查是否存在污染。健康的懸浮細胞通常呈圓形、明亮且具有折光性。

2.分散細胞(如果需要):對于容易結(jié)團的細胞，可以將細胞懸液轉(zhuǎn)移到離心管中，以150xg離心5分鐘。棄去上清液，然后將細胞沉淀重懸于新鮮培養(yǎng)基中，并用吸管輕輕吹打，使細胞分散成單細胞懸液。對于不結(jié)團的細胞，此步驟可以省略，直接進行下一步。

3.計數(shù)細胞:取少量細胞懸液(100-200μL)，用臺盼藍染色，然后使用血細胞計數(shù)器進行細胞計數(shù)和活力檢測。

4.稀釋和接種:根據(jù)細胞類型和生長速度，計算所需的細胞密度和培養(yǎng)基體積。使用新鮮的預(yù)熱完全培養(yǎng)基將細胞懸液稀釋至合適的濃度，然后將細胞懸液接種到新的、已標記的培養(yǎng)容器中。

5.培養(yǎng)細胞:將新的培養(yǎng)容器放入37°C、5%CO2的孵育器中進行培養(yǎng)。

6.定期觀察和傳代:定期觀察細胞生長狀態(tài)，根據(jù)細胞密度和活力，確定合適的傳代時間和比例。

處理生長過度的細胞:

如果細胞密度過高，培養(yǎng)基顏色發(fā)生明顯變化（例如，含酚紅的培養(yǎng)基變黃），或細胞活力下降，則表明細胞可能生長過度。在這種情況下，建議降低接種密度，并更頻繁地更換培養(yǎng)基，而不是簡單地添加條件培養(yǎng)基。對于某些細胞系，可以考慮使用條件培養(yǎng)基來促進細胞的恢復(fù)，但需要根據(jù)具體情況進行調(diào)整。

掌握細胞傳代技術(shù)是細胞培養(yǎng)成功的關(guān)鍵。本文詳細介紹了貼壁細胞和懸浮細胞傳代的具體步驟、所需材料以及一些實用技巧。雖然我們提供了通用的指導(dǎo)原則，但不同細胞類型在最佳傳代時間、胰酶濃度、接種密度等方面存在差異。因此，在進行細胞傳代操作前，務(wù)必查閱相關(guān)文獻和細胞系的具體說明書，并根據(jù)實際情況進行優(yōu)化調(diào)整。只有在實踐中不斷積累經(jīng)驗，才能更好地掌握細胞傳代技術(shù)，確保細胞的健康生長和實驗的順利進行。希望本指南能夠幫助您在細胞培養(yǎng)的道路上更加得心應(yīng)手。